Inventaire de la flore sauvage

Un inventaire de la flore sauvage du terrain de La Graine Indocile a été réalisé de 2020 à 2023 par David Bricout, que vous pouvez retrouver sur son site Oumbi. Cette inventaire a été réalisé dans le cadre d'un mémoire du Diplôme Universitaire de botanique de terrain initié par la Société Botanique de France et l'Université de Picardie Jules Verne sous le tutorat de Anne-Marie Mollet (SBF). 

Nous ne vous partagerons seulement un extrait du rapport pour des raisons de confidentialité. 

Avant de voir la liste des plantes vous retrouverez ci-dessous la méthodologie, ainsi qu'une explication du zonage réalisé. En effet dans le tableau des plantes est indiqué la zone associée a chaque plante et par conséquent le milieu propice à son implantation.

Méthodologie

EN AMONT DES RELEVÉS

Un premier travail a été de rassembler les données les plus récentes et pertinentes sur la zone d’étude : climat, nature du sol, réseau hydrographique, taxons déterminants susceptibles d’être observés, sites remarquables et relevés floristiques effectués à proximité. Au delà des données obtenues sur internet et dans certains ouvrages.

Grâce à plusieurs prises de vue aériennes, le site a été découpé en zones de prospection correspondant aux différents milieux homogènes, conditionnés par le terrain lui-même mais aussi par la nature ou l’absence d’activités humaines.

SUR LE TERRAIN

Les différentes prospections ont été réalisées zone par zone, durant 11 sessions d’environ deux heures jusqu’à une journée complète, sur les périodes printanières et estivales d’avril 2021 à juillet 2022. Les actions menées par les propriétaires et par l’association La Graine Indocile ont posé quelques contraintes pour mener à bien ce travail. Il a été nécessaire de mettre en place une organisation avec Damien Dekarz pour réaliser les relevés en dehors des temps familiaux au jardin et des tournages de vidéos, ainsi que, concernant les zones de fauche ou de pâture, pour programmer les relevés aux moments les plus opportuns : avant la tonte des espaces les plus anthropiques et les rotations de pré pour les trois équidés qui les occupent. Occasionnellement, des fauches et des mises en pâture non-anticipées ont rendu impossible la poursuite des relevés sur une zone. Hormis pour les zones de faible étendue qui ont été prospectées de manière exhaustive, plusieurs quadrats (de tailles variables en fonction du milieu) ont été installés sur des surfaces homogènes, à l’aide de piquets et d’une corde. Ces quadrats étaient de formes variables en fonction du terrain, et d’environ :

  • 1m² pour les prairies
  • 2m² pour les ourlets et les friches (y compris les zones de vergers où seuls les chemins sont
    entretenus)
  • 10-20m² pour les zones boisées comme la ripisylve


Mais un sillonnage plus ou moins serré de toutes les zones a tout de même systématiquement permis de compléter les relevés des quadrats.
Exceptionnellement, deux bandes de végétation particulière au sein des prairies ont fait l’objet d’un transect.
Régulièrement, des échantillons ont été prélevés pour en effectuer les déterminations à domicile, en raison d’un manque de temps ou d’une météo trop défavorable. Les cultures dominantes / structurantes sont précisées pour chaque zone et les plantes subspontanées identifiées comme échappées des cultures pratiquées sur place sont également mentionnées.


Les taxons inventoriés pour cette étude ont été déterminés à l’aide de loupes à main x10, x30 et x60 (notamment pour les Poacées), d’un scalpel, d’un couteau, d’une pince de dissection et des ouvrages suivants :

  • Flora Gallica (FG) sur le terrain pour la plupart des déterminations mais aussi pour vérifier les résultats obtenus avec la FAL (ci-dessous) ou pour aboutir à un éventuel taxon infraspécifique.
  • La Flore d’Auvergne et Limousin (FAL) sur le terrain, souvent plus simple d’utilisation que FG bien que moins précise.
  • Flora Vegetativa (FV) sur le terrain pour les déterminations hors période de floraison.
  • Carex d’Auvergne, ponctuellement pour déterminer la seul espèce présente : Carex hirta.
  • La Flore continentale méditerranéenne, après certaines déterminations, pour vérifications à l’aide des schémas et descriptions.
  • Plusieurs ouvrages et outils pour vérifier la cohérence des déterminations avec les données du territoire :
    • Groupements végétaux et phytogéographie de la Corrèze
    • Plantes & végétations en Limousin : atlas de la flore vasculaire
    • Les cartographies du site internet de l’INPN (Inventaire National du Patrimoine Naturel).

Zonage

De manière très simplifiée, le site se divise en deux grands secteurs.

SECTEUR DES PRÉS PÂTURÉS

Situé côté nord (en vert sur la fig. 1), il comprend les prairies P1, P2, P3 allouées à une jument comtoise et deux ânesses, et quelques zones qui leur sont inaccessibles : la « zone noyaux » (ZN), l’enclos de la pêcherie (Pc), celui de l’étang (E) et la jeune haie clôturée qui sépare P2 et P3.

SECTEUR DES ACTIVITÉS HUMAINES

Situé côté sud (en rouge sur la fig. 1), il comprend :
• Le réseau de mares 
• La grange et les zones qui l’entourent, particulièrement anthropisées. Des tontes fréquentes sont réalisées sur plusieurs zones de ce secteur.
• les zones de cultures potagères et fruitières
• Les dortoirs-pondoirs des poules et des canards.


Des cueillettes très occasionnelles de plantes spontanées comestibles sont pratiquées dans ce secteur, mais leur impact reste négligeable.

 

Schéma des zones en vue satellite du terrain

Fig 1 - Les deux secteurs du site et les zones principales

Fig 2 - Zones prospectées

ZONES PROSPECTÉES
La fig. 2 liste les zones pour lesquelles un inventaire floristique a été effectué pour constituer le présent mémoire.

(Pc) Enclos de la pêcherie
(VE) Verger des Enfants
(P1-3) Pairies pâturées
(H1-2) Haies est du site
(E) Rive est de l’étang
(ZN) « Zone noyaux »
(ZV) « Zone de vie »
(T) Terrasse
(BC) Bord de clôture est de P2

(B) Dalle de béton enherbée
(PS) Pente sèche de P2
(Rs1-2) Ripisylve
(Ch) Chemin de la « zone de vie » au potager
 (M1) Première mare du circuit
(FC) Verger « Forêt comestible »
(Po) Potager
(H3) Haie sud du potager

Liste alphabétique des taxons identifiés

Nom commun

Nom scientifique

Zones (Cf zonage plus haut)

Image (cliquez pour agrandir)

Achillée millefeuille

Achillea millefolium

Ch, ZN, BC, P2

Nielle des blés

Agrostemma githago

HC

Agrostide capillaire

Agrostis capillaris

BC, P1, P2

Agrostide stolonifère

Agrostis stolonifera

M1, Rs2, Rs1, E

Bugle rampant

Ajuga reptans

ZN, E, H1, P3, VE, Pc

Alliaire

Alliaria petiolata

H1

Vulpin des prés

Alopecurus pratensis

Po, FC, M1, ZV, H3, P1

Amarante réfléchie

Amaranthus retroflexus

BC, P2

Flouve odorante

Anthoxanthum odoratum

FC, H3, P1, P3

Fromental bulbeux

Arrhenatherum elatius subsp. bulbosum

Po, Ch

Arum d’Italie

Arum italicum

H1

Arroche des jardins

Atriplex hortensis

Po

Arroche étalée

Atriplex patula

T

Canche flexueuse

Avenella flexuosa

Po

Pâquerette vivace

Bellis perennis

P1

Blette

Beta vulgaris

Po

Brome mou

Bromus hordeaceus

Po, FC, Ch

Capselle bourse-à-pasteur

Capsella bursa-pastoris

BC, P1, P2

Cardamine des prés

Cardamine pratensis

Rs1, P1, Pc

Laîche hérissée

Carex hirta

Po, FC, Ch, H3, P1

Catalpa

Catalpa bignonioides 

Pc

Centaurée jacée

Centaurea jacea

Po, FC, Ch, BC, P1, P2, P3, VE 

Céraiste aggloméré

Cerastium glomeratum

ZN, BC, P1, P2, P3

Chénopode blanc

Chenopodium album

Po, ZV, BC, P2

Cirse des champs

Cirsium arvense

Po, P1

Cirse des marais

Cirsium palustre

Rs1, E, Pc

Cirse commun

Cirsium vulgare

BC, P2

Liseron des champs

Convolvulus arvensis

Po, B, T,  P1

Liseron des haies

Convolvulus sepium

Po, Rs2, H3, PS

Cornouiller sanguin

Cornus sanguinea

H3, H1, Pc

Noisetier

Corylus avellana

H1

Aubépine à un style

Crataegus monogyna

FC, H3, H1, PS, VE, Pc

Crépis capillaire

Crepis capillaris

P1, P2, P3

Gaillet croisette

Cruciata laevipes

H1

Crételle commune

Cynosurus cristatus

Po, P1, P3

Cytise à balais

Cytisus scoparius

Pc

Dactyle aggloméré

Dactylis glomerata

Po, FC, Ch, T, ZV, H3, PS, P1, P2, P3, Pc

Datura

Datura stramonium

Po

Dryoptéris fougère-mâle

Dryopteris filix-mas

Pc

Épilobe hirsute

Epilobium hirsutum

ZV

Épilobe à quatre angles

Epilobium tetragonum

Rs1, E

Prêle des eaux

Equisetum fluviatile

Rs2

Prêle des marais

Equisetum palustre

Rs2, Rs1

Vergerette du Canada

Erigeron canadensis

B, ZV

Fusain d'Europe

Euonymus europaeus

H3, Pc

Reine-des-prés

Filipendula ulmaria

M1, Rs2, Rs1

Ortie royale

Galeopsis tetrahit

Rs2, Rs1, Pc

Gaillet gratteron

Galium aparine

Po, FC, Ch, T, H3, H1, VE, Pc

Gaillet des marais

Galium palustre

Rs2, Rs1, PS

Géranium à feuilles découpées

Geranium dissectum

Po, FC, M1, Ch, B, T, ZV, P1, P2, VE

Géranium herbe-à-Robert

Gerabium robertianum

Pc

Benoîte urbaine

Geum urbanum

Rs1

Lierre terrestre

Glechoma hederacea

FC, ZV, H3, H1, Pc

Glycérie déclinée

Glyceria declinata

M1

Lierre grimpant

Hedera helix

Rs1, H3, H1, Pc

Ache nodiflore

Helosciadium nodiflorum

M1

Grande berce

Heracleum sphondylium

H1

Houlque laineuse

Holcus lanatus

Po, ZV, BC, P1, P2, P3

Houlque hybride

Holcus x hybridus

M1, Rs2, Rs1, H3

Millepertuis perforé

Hypericum perforatum

P1

Porcelle enracinée

Hypochaeris radicata

ZV, PS, P1, P2, P3

Noyer commun

Juglans regia

Pc

Jonc épars

Juncus effusus

M1, Rs2, Rs1, E

Laitue cultivée

Lactuca sativa

Po

Laitue scariole

Lactuca serriola

Po, B

Lamier pourpre

Lamium purpureum

ZV

Lampsane commune

Lapsana communis

Po, B, ZV

Gesse aphylle

Lathyrus aphaca

ZN

Gesse des prés

Lathyrus pratensis

Po, H3, P1, P2, P3

Petite lentille d'eau

Lemna minor

M1, Pc

Marguerite commune

Leucanthemum vulgare

Po, T, PS, P1

Lin à feuilles étroites

Linum usitatissimum subsp. angustifolium

Po, P1

Ivraie vivace

Lolium perenne

B, T, ZV, H3, BC, P1, P2, P3 

Lotier corniculé

Lotus corniculatus

FC, ZV, BC, P1, P2, P3, VE

Lotier des marais

Lotus pedunculatus

Rs2, Rs1

Luzule des champs

Luzula campestris

Rs2, ZV, PS, P3

Lycope d’Europe

Lycopus europaeus

E

Salicaire

Lythrum salicaria

M1

Mauve musquée

Malva moschata

ZN

Matricaire discoïde

Matricaria discoidea

B

Mélisse officinale

Melissa officinalis

Po

Orchis brûlé

Neotinea ustulata

ZN, P3

OEnanthe faux boucage

Oenanthe pimpinelloides

FC, P1, P2, P3

Persicaire poivre-d’eau

Persicaria hydropiper

Rs2, ZV, PS

Persicaire maculée

Persicaria maculosa

BC, P2

Phacélie à feuilles de tanaisie

Phacelia tanacetifolia

Po

Fléole des prés

Phleum pratense

PS

Raisin d’Amérique

Phytolacca americana

Pc

Plantain lancéolé

Plantago lanceolata

Po, FC, B, ZV, ZN, BC, P1, P2, P3, VE, Pc

Plantain majeur

Plantago major

Po, B, T, BC, P1, P2, P3 

Pâturin annuel

Poa annua

Po, FC, Ch, B, T, ZV, P1, P2, P3, VE

Pâturin des prés

Poa pratensis

FC

Pâturin commun

Poa trivialis

Po, M1, Ch, T, BC, P1, P2, P3 

Renouée des oiseaux

Polygonum aviculare

B, T, BC, P1, P2

Potentille tormentille

Potentilla erecta

PS

Potentille stérile

Potentilla sterilis

P1

Primevère commune

Primula vulgaris

H1

Brunelle commune

Prunella vulgaris

PS, P1

Prunellier

Prunus spirnosa var. spinosa

FC, H3, H1, Pc

Chêne pédonculé

Quercus robur

Pc

Stellaire holostée

Rabelera holostea

H1, Pc

Renoncule âcre

Ranunculus acris

Po, FC, Ch, ZN, H3, P1, P2, P3 

Renoncule flammette

Ranunculus flammula

Rs2, Rs1, E

Renoncule rampante

Ranunculus repens

FC, M1, Ch, Rs1, ZV, ZN, PS, P1, P2, P3, VE, Pc

Renoncule de Sardaigne

Ranunculus sardous

Po

Robinier faux-acacia

Robinia pseudoacacia

H1

Rubus bifrons

Rubus bifrons

H2

Grande oseille

Rumex acetosa

FC, ZN, H3, PS, P1, P2, P3

Petite oseille

Rumex acetosella

FC, Ch, BC, P2

Patience crépue

Rumex crispus

FC

Patience à feuilles obtuses

Rumex obtusifolius

Po, Ch, B, T, H3, BC, P1, P2, P3,  Pc

Saule marsault

Salix caprea

Rs1, Pc

Sureau noir

Sambucus nigra

Pc

Scirpe des bois

Scirpus sylvaticus

M1, Rs1, ZV

Scrofulaire noueuse

Scrophularia nodosa

Pc

Morelle douce-amère

Solanum dulcamara

Rs1

Laiteron rude

Sonchus asper

ZV

Rubanier d’eau

Sparganium erectum

Rs2

Stellaire graminée

Stellaria graminea

Po, Ch, ZN, PS, P2

Mouron blanc

Stellaria media

T, ZV

Stellaire des marais

Stellaria palustris

Rs1

Consoude du Caucase

Symphytum caucasicum

Po

Pissenlit officinal

Taraxacum officinale

Po, B, ZV,  P1, P2, P3, VE, Pc

Torilis du Japon

Torilis japonica

H2

Trèfle douteux

Trifolium dubium

ZV, BC, P1, P2

Trèfle des prés

Trifolium pratense

Po, ZV, BC, PS, P1, P2, P3, VE, Pc

Trèfle rampant

Trifolium repens

Po, FC, Ch, B, T, ZV, BC, P1, P2, P3

Matricaire inodore

Tripleurospermum inodorum

Po, B, BC, P1, P2

Massette à larges feuilles

Typha latifolia

M1

Ortie dioïque

Urtica dioica

Po, Rs1, T, ZV, H3, H1, P1, Pc

Bouillon blanc

Verbascum thapsus

Pc

Verveine officinale

Verbena officinalis

Po, Ch, T, ZV, P1, P2

Véronique à feuilles de chêne

Veronica chamaedrys

FC, H1, P3, Pc

Véronique à feuilles de lierre

Veronica hederifolia

H1

Véronique de Perse

Veronica persica

ZV

Véronique à feuilles de serpolet

Veronica serpyllifolia

P1, Pc

Vesce des moissons

Vicia segetalis

P1

Violette de Rivinus

Viola riviniana

Rs1, H1, Pc

Gui blanc

Viscum album

VE, Pc

Pour aller plus loin…

Les notes complémentaires ci-après concernent les taxons faisant partie de groupes particulièrement complexes (Cichorieae, Juncaceae, Poaceae) et ayant amené des difficultés de détermination sur le terrain. Sont reportés ici les critères simples retenus pour une identification rapide.

Asteraceae Liguliflores
  • Crepis capillaris
    L’espèce est très commune dans les prés pâturés (P1-2-3).
    • Critères simplifiés (à partir de FG) pour le genre Crepis : Cichorieae à +20 fleurons jaunes, akène à bec nettement rétréci, involucre sur 2 rangs.
    • Critères simplifiés (à partir de la FAL) pour C. capillaris : feuilles découpées lobées, nombreux petits capitules <15mm de diamètre (les autres espèces de la dition possèdent des feuilles entière à dentées et/ou des capitules de 20 à 30mm de diamètre).
  • Lactuca serriola
    L’espèce est fauchée systématiquement sur le site, soit pour empêcher une hybridation avec les laitues cultivées, soit parce qu’elles poussent dans des zones passantes. N’ayant pas la possibilité d’observer une floraison, l’identification s’est faite à l’aide de FV.
    • Astéracée à latex blanc ; feuilles caulinaires opposées, auriculées, à face supérieure
      (sub)glabre, nervure principale épineuse sur la face inférieure, les secondaires glabres.

Juncaceae
  • Juncus effusus
    La FAL et FG nous permettent très rapidement
    d’aboutir à la dyade J. effusus / J. conglomeratus.
    • Pour FG : grandes plantes (⩾50cm) présentes à
      l’étage collinéen, à feuille bractéale cylindrique et feuilles non-bractéales réduites à des gaines basales ; normalement plus de 25 fleurs involucrées.
    • Pour la FAL : espèces (présentes en Limousin), à tige nue et feuilles non-bractéales réduites à une gaine ; inflorescence latérale dépassée par l’apex d’une tige vert franc et épaisse.

Il n’est pas évident de distinguer Juncus effusus de J. conglomeratus à l’aide de FG, sans une comparaison de visu (forme de la capsule, base de la feuille bractéale). De plus, FG donne une tige lisse pour J. effusus, et une tige finement striée pour J. conglomeratus. Or à fort grossissement (30x), J. effusus montre de très fines stries, également décelables en grattant la tige avec l’ongle. Une vérification sur FloreAlpes a été nécessaire pour vérifier que, chez J. conglomeratus, les stries sont nettement plus larges et marquées.


Pour ce dernier critère, la FAL donne une description plus éclairante :
◦ J. effusus : tige sub-lisse
◦ J. conglomeratus : tige striée

Poaceae
  • Agrostis capillaris subsp. capillaris / Agrostis stolonifera
    Une petite difficulté a été rencontrée face à la présence de Agrostis capillaris subsp. capillaris et Agrostis stolonifera sur le site, mais un critère simple permet de les distinguer :
    • A. capillaris : ligule tronquée. La sous-espèce capillaris est
      la seule présente à l’étage collinéen.
    • A. stolonifera : ligule obtuse. On note également que A.
      stolonifera est une espèce des milieux plutôt hygrophiles.
  • Cynosurus cristatus
    Cette espèce est assez commune dans les prairies pâturées (P1-2-3) et la prairie fauchée du potager (Po). La difficulté ici a été de comprendre l’agencement des épillets et la nature des glumelles stériles.
    • Chaque rameau porte des épillets stériles d’aspect pectiné, constitués de plusieurs paires de glumelles stériles linéaires alignées sur deux rangs, et d’un épillet fertile à 2 fleurons minimum (jusqu’à 5).
  • Lolium perenne
    Espèce des zones piétinées, on la trouve partout aux abords de la grange, mais aussi dans les zones les plus compactées des prés pâturés (P 1-2-3). La difficulté ici a été de ne pas réaliser tout de suite la présence d’une seule glume par épillet. Cette erreur nous orientait vers le genre Elytrigia (FG), ce qui ne correspondait pas, ne serait-ce que visuellement sur lesphotographies de FloreAlpes.

Remerciements de David

 

Je remercie avant tout la Société Botanique de France et l’Université de Picardie Jules Verne pour m’avoir permis d’intégrer ce cursus, ma tutrice Anne-Marie Mollet pour son temps, ses encouragements et ses conseils, ainsi que toute l’équipe pédagogique, mes camarades de promotion
et tout particulièrement Suzanne Lefort, Mathilde Poissenot et Océane Touzet pour les moments extrêmement riches que nous avons partagés, dans l’apprentissage comme au niveau humain.


Je remercie Marie Adinarayanin et Damien Dekarz pour leur accueil et leur enthousiasme quant à ce projet, et pour les nombreuses informations qu’ils ont pris le temps de me transmettre concernant le site, son histoire, son fonctionnement et les espèces introduites. Je les remercie également pour leur confiance et l’autorisation d’explorer les zones humides du site, ordinairement interdites d’accès
afin d’y accueillir une biocénose préservée de la moindre intervention.


Je remercie Laurent Chabrol, responsable du Pôle Biodiversité au CPIE de Corrèze, pour m’avoir aiguillé vers des ressources parfaitement pertinentes, et l’Observatoire de la Biodiversité Végétale Nouvelle-Aquitaine pour m’avoir transmis des données récentes sur les espèces déterminantes du territoire.

Je remercie enfin les señoritas Marie Fernandez et Maite Manzano Lopez pour leurs soutiens
complémentaires durant ces trois années.
Photographies

Bibliographie :

  • E. BRUGEL, L. BRUNERYE, A. VILKS, Plantes & végétations en Limousin : atlas de la flore vasculaire, Conservatoire Régional des Espaces Naturels du Limousin, 2001
  • L. BRUNERYE, Groupements végétaux et phytogéographie de la Corrèze, Société Botanique du Centre-Ouest, numéro spécial 47, 2020
  • A. CAILLON, S. BONIFAIT, L. CHABROL, J. DAO, N. LEBLOND, Q. RAGACHE, Liste hiérarchisée des plantes exotiques envahissantes de Nouvelle-Aquitaine, Conservatoire Botanique National Sud-Atlantique (coord.), Conservatoire Botanique National du Massif central et Conservatoire Botanique National des Pyrénées et de Midi- Pyrénées, v1.0, 2022
  • L. CHABROL, ZNIEFF 740120092, Bois et zones humides de la Grènerie, Espaces Naturels du Limousin, INPN, SPNMNHN Paris, [en ligne, consulté le 06-09-2023] https://inpn.mnhn.fr/zone/znieff/740120092.pdf
  • P. DUBOC, Flore d’Auvergne et Limousin : clé d’identification de la flore auvergnate et limousine, Pascal Duboc, 2020
  • S. EGGENBERG, A. MÖHL, Flora Vegetativa, 3e édition, Rossolis, 2020
  • J.-P. FLOC'H, P.-L. GUILLOT, D. SANTALLIER, Notice explicative de la feuille Uzerche à 1/50.000, Bureau des recherches géologiques et minières, 1984
  • O. GARGOMINY [et al.], TAXREF v16.0, référentiel taxonomique pour la France. PatriNat (OFB-CNRS-MNHN), Muséum national d'Histoire naturelle, Paris, 2022
  • V. FIERS, Études scientifiques en espaces naturels, Outils de gestion et de planification, Cahiers techniques n°72, 2003
  • J. HO HOA, Longtemps surnommée le "château d'eau" de la France, quelles sont les ressources en eau réelles de la Creuse ?, La Montagne, 27 juillet 2020 [en ligne, consulté le 06-09-2023] https://www.lamontagne.fr/gueret-23000/actualites/longtemps-surnommee-le-chateau-d-eau-de-la-france-quelles-sontles- ressources-en-eau-reelles-de-la-creuse_13816623/
  • P. LACHASSAGNE, B. DEWANDEL, R. WYNS, De l’eau souterraine dans les roches granitiques et métamorphiques ?, Encyclopédie de l’environnement, 2018 [en ligne, consulté le 07-09 2023] https://www.encyclopedie-environnement.org/eau/eau-souterraine-roches-granitiques-metamorphiques/
  • F. LE DRIANT, FloreAlpes, 2019 [en ligne, consulté le 06-09-2023] https://www.florealpes.com/
  • M. LEPŠÍ [et al.], Stellaria ruderalis, a new species in the Stellaria media group from central Europe, Preslia 91, 2019, p. 391–420.
  • U. MAIER, H. SCHLICHTHERLE, M.A. BORRELLO, Céréales, mauvaises herbes et faucilles : à la recherche des premiers agriculteurs au nord des Alpes, Le Globe, 155, 2015, p. 47-64.
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  • R. PORTAL, Carex d’Auvergne, Digitalis, 2013
  • R. THOMAS, D. BUSTI, M. MAILLART, Petite flore de France, Belgique, Luxembourg, Suisse, Belin, 2016
  • J.-M. TISON, B. DE FOUCAULT, Flora Gallica : Flore de France, Biotope Éditions, 2014
  • J.-M. TISON, P. JAUZEIN, H. MICHAUD, Flore de la France méditerranéenne continentale, Naturalia Publications, 2014
  • I.A. ZELAYA, M.D.K. OWEN, M.J. VANGESSEL, Inheritance of evolved glyphosate resistance in Conyza canadensis (L.) Cronq., Theoretical and Applied Genetics 110, 58–70, 2004
  • Arrêté du 1 septembre 1989 relatif à la liste des espèces végétales protégées en région Limousin complétant la liste nationale, Légifrance, 1989 [en ligne, consulté le 06-09-2023] https://www.legifrance.gouv.fr/loda/id/JORFTEXT000000690918/
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  • Centre de Ressources Espèces Exotiques Envahissantes, OFB & UICN France [en ligne, consulté le 13-09-2023] http://especes-exotiques-envahissantes.fr/
  • Commune de Salon-La-Tour, Zones humides : source de vie, EPIDOR – Etablissement public territorial du bassin de la Dordogne, 2011
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  • Géoportail, IGN, 2021 [en ligne, consulté le 06-09-2023] https://www.geoportail.gouv.fr/carte
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